貼壁細胞的傳代

所需材料

Ø 裝有貼壁細胞的培養(yǎng)容器

Ø 經(jīng)過組織培養(yǎng)處理的培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)板或培養(yǎng)皿

Ø *生長培養(yǎng)基，預熱至 37℃

Ø 一次性無菌15ml試管

Ø 37℃ 培養(yǎng)箱，充有二氧化碳濃度為 5% 的濕化空氣

Ø 平衡鹽溶液，例如：杜爾貝科磷酸鹽緩沖液 (DPBS)，不含鈣、鎂和酚紅

Ø 消化酶，例如：胰蛋白酶，不含酚紅

貼壁細胞傳代流程

細胞培養(yǎng)一定要保持工作區(qū)的無菌清潔，先用紫外燈和臭氧殺菌1h，然后通風30min，操作前需要換細胞間拖鞋，雙手帶上一次性橡膠手套并用75%乙醇消毒，穿上實驗服，戴上一次性口罩和帽子，整個無菌操作都應該在酒精燈的周圍進行。

1. 取對數(shù)生長期的貼壁細胞，棄掉舊培養(yǎng)基。

2. 用磷酸鹽緩沖液（PBS）沖洗細胞1-2遍。 (每10 cm2 培養(yǎng)表面積需要2 ml 溶液)。從與貼壁細胞層相對的容器一側輕輕加入沖洗液，以避免攪動細胞層，前后搖晃容器數(shù)次。

注：沖洗步驟可去除可能抑制消化酶作用的少量血清、鈣和鎂。

3. 從培養(yǎng)容器中吸出沖洗液并丟棄。

4. 向培養(yǎng)瓶中加入預熱的消化酶(例如：胰蛋白酶)；試劑量應足以覆蓋細胞層 (每10 cm2 大約0.5ml)。輕輕搖晃容器，使試劑*覆蓋細胞層。

5. 將培養(yǎng)容器在室溫下孵育約2分鐘。

請注意，實際孵育時間根據(jù)所用細胞系不同可能有所差異。

6. 在顯微鏡下觀察細胞解離情況。如果解離程度未達90%，可將孵育時間延長幾分鐘，每30秒鐘檢查一次解離情況。也可輕輕拍打培養(yǎng)容器以加快細胞解離。

7. 細胞解離程度大于等于90%時，傾斜培養(yǎng)容器，使細胞上液體盡快流盡。加入所用消化酶兩倍體積的預熱*生長培養(yǎng)基。輕柔吹打細胞層表面數(shù)次，使細胞分散，成為單細胞懸液。

8. 將細胞轉(zhuǎn)移到 15ml 離心管中，200g 離心5至10分鐘。

請注意，離心速度和時間依細胞種類不同而有所差異。

9. 用zui少體積的預熱*生長培養(yǎng)基重新懸浮細胞沉淀。

注：此時可進行細胞計數(shù)

10.將細胞懸液稀釋到該細胞系推薦的接種密度，并將適量體積的細胞懸液轉(zhuǎn)移到新的細胞培養(yǎng)容器中，把細胞放回培養(yǎng)箱。

注：如果使用培養(yǎng)瓶，將其放入培養(yǎng)箱前應將瓶蓋旋松，以便進行充分的氣體交換，除非您使用的是通氣式培養(yǎng)瓶和透氣性瓶蓋。

懸浮細胞的傳代

懸浮細胞傳代比貼壁細胞傳代稍微簡單一些。由于細胞已經(jīng)在生長培養(yǎng)基中懸浮，因此無需通過酶的作用使其從培養(yǎng)容器表面脫離，整個過程較為迅速，對細胞的損傷也較小。懸浮生長細胞的傳代培養(yǎng)要比貼壁細胞簡單得多，通常有兩種方法。

1．直接給帶傳代的培養(yǎng)瓶中補充一定量的新鮮培養(yǎng)基，然后將進行分裝。

2．先通過離心棄掉營養(yǎng)匱乏的舊培養(yǎng)基，然后再用適量的新鮮培養(yǎng)基重懸細胞沉淀，zui后將其分裝至培養(yǎng)瓶中即可。

懸浮細胞傳代后的延滯期一般比貼壁細胞短。

所需材料

• 裝有懸浮細胞的培養(yǎng)容器

• *生長培養(yǎng)基，預熱至37℃

• 37℃培養(yǎng)箱，充有二氧化碳濃度為5%的濕化空氣

懸浮細胞傳代流程

所有與細胞接觸的溶液和設備均應為無菌狀態(tài)。必須采用正確的無菌技術，并且在超凈臺內(nèi)進行。傳代應在細胞處于對數(shù)期、未達到匯合狀態(tài)時進行。達到匯合狀態(tài)時，懸浮培養(yǎng)的細胞會聚集成團塊，轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶時培養(yǎng)基會變得渾濁。傳代前所建議的zui大細胞密度隨細胞系不同而有所差異；詳細信息請參閱針對具體細胞的產(chǎn)品說明書或操作手冊。

懸浮細胞的傳代方法有2種

1、直接傳代法：

①待懸浮細胞長滿至80%-90%左右（細胞懸液變黃），即可傳代；

②用吸管吸棄細胞懸液1/2～2/3；

③加入適量的新鮮培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)。

2、離心傳代法：

①將細胞懸液轉(zhuǎn)移到離心管內(nèi)；

②150g離心5min，棄上清；

③使用新鮮的培養(yǎng)基重懸細胞；

④吸管吸取適量細胞懸液，裝入新的培養(yǎng)瓶，再加入適量的新鮮培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)；